Este estudo demostra que o fungo asociado ás raíces Kosakonia oryziphila NP19, illado das raíces do arroz, é un biopesticida prometedor que promove o crecemento das plantas e un axente bioquímico para o control da blastosis do arroz. Realizáronse experimentos in vitro en follas frescas de mudas de arroz aromático Khao Dawk Mali 105 (KDML105). Os resultados mostraron que NP19 inhibiu eficazmente a xerminación das conidias fúnxicas da blastosis do arroz. A infección fúnxica inhibiuse en tres condicións de tratamento diferentes: inoculación de arroz con NP19 e conidias fúnxicas; inoculación simultánea das follas con NP19 e conidias fúnxicas; e inoculación das follas con conidias fúnxicas seguida de tratamento con NP19 30 horas despois. Ademais, NP19 reduciu o crecemento das hifas fúnxicas entre un 9,9 e un 53,4 %. En experimentos en maceta, a NP19 aumentou as actividades da peroxidase (POD) e da superóxido dismutase (SOD) nun 6,1 % a un 63,0 % e nun 3,0 % a un 67,7 %, respectivamente, o que indica uns mecanismos de defensa das plantas mellorados. En comparación cos controis de NP19 non infectados, as plantas de arroz infectadas con NP19 mostraron un aumento no contido de pigmentos do 0,3 % ao 24,7 %, no número de grans enteiros por panícula do 4,1 %, no rendemento de grans enteiros do 26,3 %, no índice de masa de rendemento do 34,4 % e no contido do composto aromático 2-acetil-1-pirrolina (2AP) do 10,1 %. Nas plantas de arroz infectadas tanto con NP19 como con blastosma, os aumentos foron do 0,2 % ao 49,2 %, 4,6 %, 9,1 %, 54,4 % e 7,5 %, respectivamente. Os experimentos de campo mostraron que as plantas de arroz colonizadas e/ou inoculadas con NP19 presentaron un aumento no número de grans enteiros por panícula do 15,1 ao 27,2 %, un rendemento de gran enteiro do 103,6 ao 119,8 % e un contido de 2AP do 18,0 ao 35,8 %. Estas plantas de arroz tamén presentaron unha maior actividade de SOD (6,9-29,5 %) en comparación coas plantas de arroz infectadas por apoptosis non inoculadas con NP19. A aplicación foliar posterior á infección de NP19 ralentizou a progresión da lesión. Polo tanto, demostrouse que K. oryziphila NP19 é un bioaxente promotor do crecemento das plantas e un biopesticida potencial para o control da apoptosis do arroz.
Non obstante, a eficacia dos funxicidas vese influenciada por moitos factores, como a formulación, o momento e o método de aplicación, a gravidade da enfermidade, a eficacia dos sistemas de previsión de enfermidades e a aparición de cepas resistentes aos funxicidas. Ademais, o uso de funxicidas químicos pode causar toxicidade residual no medio ambiente e supoñer un risco para a saúde dos usuarios.
No experimento en maceta, as sementes de arroz esterilizáronse superficialmente e xermináronse como se describiu anteriormente. Despois sementáronse con K. oryziphila NP19 e transplantáronse a bandexas de mudas. As mudas incubáronse durante 30 días para permitir que emerxesen as mudas de arroz. Despois, as mudas transplantáronse a macetas. Durante o proceso de transplante, as plantas de arroz fertilizáronse para preparalas para a infección co fungo que causa a enfermidade da rubéola e para probar a súa resistencia.
Nun experimento de campo, as sementes xerminadas infectadas con Aspergillus oryzae NP19 tratáronse empregando o método descrito anteriormente e dividíronse en dous grupos: sementes infectadas con Aspergillus oryzae NP19 (RS) e sementes non infectadas (US). As sementes xerminadas plantáronse en bandexas con terra esterilizada (unha mestura de terra, casca de arroz queimada e esterco nunha proporción de 7:2:1 en peso) e incubáronse durante 30 días.
Engadiuse unha suspensión de conidios de *K. oryziphila* a arroz R e, despois de 30 horas de incubación, engadíronse 2 μl de *K. oryziphila* NP19 no mesmo lugar. Todas as placas de Petri incubáronse a 25 °C na escuridade durante 30 horas e despois incubáronse baixo iluminación continua. Cada grupo replicouse tres veces. Despois de 72 horas de incubación, examináronse as seccións das plantas e sometéronse a microscopía electrónica de varrido. En resumo, as seccións das plantas fixáronse en solución salina tamponada con fosfato que contiña glutaraldehído ao 2,5 % (v/v) e deshidratáronse nunha serie de solucións de etanol. As mostras secáronse no punto crítico con dióxido de carbono, despois recubríronse con ouro e observáronse baixo un microscopio electrónico de varrido durante 15 minutos.
Data de publicación: 13 de outubro de 2025