Grazas por visitar Nature.com. A versión do navegador que estás a usar ten compatibilidade limitada con CSS. Para obter mellores resultados, recomendámosche que uses unha versión máis recente do teu navegador (ou que desactives o modo de compatibilidade en Internet Explorer). Mentres tanto, para garantir a compatibilidade continua, mostramos o sitio sen estilos nin JavaScript.
As plantas de follaxe decorativa cun aspecto exuberante son moi valoradas. Unha forma de conseguilo é usar reguladores do crecemento das plantas como ferramentas de xestión do crecemento das plantas. O estudo realizouse en Schefflera anana (unha planta de follaxe ornamental) tratada con pulverizacións foliares de ácido xiberélico e hormona benciladenina nun invernadoiro equipado cun sistema de irrigación por néboa. A hormona pulverizouse sobre as follas de schefflera anana a concentracións de 0, 100 e 200 mg/l en tres etapas cada 15 días. O experimento realizouse de forma factorial nun deseño completamente aleatorio con catro repeticións. A combinación de ácido xiberélico e benciladenina a unha concentración de 200 mg/l tivo un efecto significativo no número de follas, a área foliar e a altura da planta. Este tratamento tamén deu lugar ao maior contido de pigmentos fotosintéticos. Ademais, as proporcións máis altas de carbohidratos solubles e azucres redutores observáronse con tratamentos de 100 e 200 mg/L de benciladenina e 200 mg/L de xiberelina + benciladenina. A análise de regresión paso a paso mostrou que o volume das raíces foi a primeira variable en entrar no modelo, explicando o 44 % da variación. A seguinte variable foi a masa das raíces frescas, e o modelo bivariante explicou o 63 % da variación no número de follas. O maior efecto positivo sobre o número de follas foi exercido polo peso das raíces frescas (0,43), que se correlacionou positivamente co número de follas (0,47). Os resultados mostraron que o ácido xiberélico e a benciladenina a unha concentración de 200 mg/l melloraron significativamente o crecemento morfolóxico, a clorofila e a síntese de carotenoides de *Liriodendron tulipifera*, e reduciron o contido de azucres e carbohidratos solubles.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr é unha planta ornamental de folla perenne da familia Araliaceae, orixinaria da China e Taiwán1. Esta planta cultívase a miúdo como planta de interior, pero só unha planta pode crecer en tales condicións. As follas teñen de 5 a 16 folíolos, cada un de 10-20 cm2 de longo. A Schefflera anana véndese en grandes cantidades cada ano, pero os métodos de xardinería modernos raramente se usan. Polo tanto, o uso de reguladores do crecemento das plantas como ferramentas de xestión eficaces para mellorar o crecemento e a produción sostible de produtos hortícolas require máis atención. Hoxe en día, o uso de reguladores do crecemento das plantas aumentou significativamente3,4,5. O ácido xiberélico é un regulador do crecemento das plantas que pode aumentar o rendemento das plantas6. Un dos seus efectos coñecidos é a estimulación do crecemento vexetativo, incluíndo o alongamento do talo e a raíz e o aumento da área foliar7. O efecto máis significativo das xiberelinas é un aumento da altura do talo debido ao alongamento dos internodos. A pulverización foliar de xiberelinas en plantas ananas que non poden producir xiberelinas resulta nun maior alongamento do talo e da altura da planta8. A pulverización foliar de flores e follas con ácido xiberélico a unha concentración de 500 mg/l pode aumentar a altura, o número, o ancho e a lonxitude das follas da planta9. Informouse de que as xiberelinas estimulan o crecemento de varias plantas de folla ancha10. Observouse un alongamento do talo no piñeiro silvestre (Pinussylvestris) e no abeto branco (Piceaglauca) cando se pulverizaron as follas con ácido xiberélico11.
Un estudo examinou os efectos de tres reguladores do crecemento vexetal con citocinina na formación de ramas laterais en *Lily officinalis*. Realizáronse experimentos no outono e na primavera para estudar os efectos estacionais. Os resultados mostraron que a cinetina, a benciladenina e a 2-preniladenina non afectaron a formación de ramas adicionais. Non obstante, 500 ppm de benciladenina resultaron na formación de 12,2 e 8,2 ramas subsidiarias nos experimentos de outono e primavera, respectivamente, en comparación con 4,9 e 3,9 ramas nas plantas de control. Os estudos demostraron que os tratamentos de verán son máis eficaces que os de inverno12. Noutro experimento, as plantas de *Peace Lily* var. Tassone foron tratadas con 0, 250 e 500 ppm de benciladenina en macetas de 10 cm de diámetro. Os resultados mostraron que o tratamento do solo aumentou significativamente o número de follas adicionais en comparación coas plantas de control e as tratadas con benciladenina. Observáronse novas follas adicionais catro semanas despois do tratamento e a produción máxima de follas observouse oito semanas despois do tratamento. Ás 20 semanas posteriores ao tratamento, as plantas tratadas co solo tiveron un menor aumento de altura que as plantas pretratadas13. Informouse de que a benciladenina a unha concentración de 20 mg/L pode aumentar significativamente a altura da planta e o número de follas en Croton 14. Nos lirios de cala, a benciladenina a unha concentración de 500 ppm provocou un aumento no número de ramas, mentres que o número de ramas foi o menor no grupo de control15. O obxectivo deste estudo foi investigar a pulverización foliar de ácido xiberélico e benciladenina para mellorar o crecemento de Schefflera dwarfa, unha planta de follaxe ornamental. Estes reguladores do crecemento das plantas poden axudar aos produtores comerciais a planificar a produción axeitada durante todo o ano. Non se realizaron estudos para mellorar o crecemento de Liriodendron tulipifera.
Este estudo realizouse no invernadoiro de investigación de plantas de interior da Universidade Islámica Azad en Jiloft, Irán. Preparáronse transplantes uniformes de raíces ananas de Schefflera cunha altura de 25 ± 5 cm (propagáronse seis meses antes do experimento) e sementáronse en macetas. A maceta é de plástico, negra, cun diámetro de 20 cm e unha altura de 30 cm16.
O medio de cultivo neste estudo foi unha mestura de turba, humus, area lavada e casca de arroz nunha proporción de 1:1:1:1 (por volume)16. Coloque unha capa de seixos no fondo da maceta para a drenaxe. As temperaturas medias diúrnas e nocturnas no invernadoiro a finais da primavera e no verán foron de 32 ± 2 °C e 28 ± 2 °C, respectivamente. A humidade relativa oscila entre >70 %. Use un sistema de néboa para o rego. De media, as plantas reganse 12 veces ao día. No outono e no verán, o tempo de cada rego é de 8 minutos e o intervalo entre regos é de 1 hora. As plantas cultiváronse de xeito similar catro veces, 2, 4, 6 e 8 semanas despois da sementeira, cunha solución de micronutrientes (Ghoncheh Co., Irán) a unha concentración de 3 ppm e regáronse con 100 ml de solución cada vez. A solución nutritiva contén N 8 ppm, P 4 ppm, K 5 ppm e oligoelementos Fe, Pb, Zn, Mn, Mo e B.
Preparáronse tres concentracións de ácido xiberélico e o regulador do crecemento vexetal benciladenina (adquirido a Sigma) a 0, 100 e 200 mg/L e pulverizáronse sobre os brotes das plantas en tres etapas cun intervalo de 15 días17. Utilizouse Tween 20 (0,1 %) (adquirido a Sigma) na solución para aumentar a súa lonxevidade e taxa de absorción. Pola mañá cedo, pulverice as hormonas sobre os brotes e as follas de Liriodendron tulipifera cun pulverizador. As plantas pulverízanse con auga destilada.
En diferentes tratamentos medíronse a altura da planta, o diámetro do talo, a área foliar, o contido de clorofila, o número de internodos, a lonxitude das ramas secundarias, o volume da raíz, a lonxitude da raíz, a masa da folla, a raíz, o talo e a materia fresca seca, o contido de pigmentos fotosintéticos (clorofila a, clorofila b), clorofila total, carotenoides, pigmentos totais), azucres redutores e carbohidratos solubles.
O contido de clorofila das follas novas mediuse 180 días despois da pulverización cun medidor de clorofila (Spad CL-01) de 9:30 a 10:00 (debido á frescura das follas). Ademais, mediuse a área foliar 180 días despois da pulverización. Pesáronse tres follas da parte superior, central e inferior do talo de cada maceta. Estas follas utilízanse despois como modelos en papel A4 e recórtase o patrón resultante. Tamén se mediu o peso e a superficie dunha folla de papel A4. Despois, calcúlase a área das follas estarcidas usando as proporcións. Ademais, determinouse o volume da raíz usando unha probeta graduada. O peso seco da folla, o peso seco do talo, o peso seco da raíz e o peso seco total de cada mostra medíronse mediante secado ao forno a 72 °C durante 48 horas.
O contido de clorofila e carotenoides mediuse mediante o método de Lichtenthaler18. Para iso, moéronse 0,1 g de follas frescas nun morteiro de porcelana que contiña 15 ml de acetona ao 80 % e, despois de filtralas, mediuse a súa densidade óptica cun espectrofotómetro a lonxitudes de onda de 663,2, 646,8 e 470 nm. Calibra o dispositivo usando acetona ao 80 %. Calcula a concentración de pigmentos fotosintéticos usando a seguinte ecuación:
Entre elas, Chl a, Chl b, Chl T e Car representan a clorofila a, a clorofila b, a clorofila total e os carotenoides, respectivamente. Os resultados preséntanse en mg/ml de planta.
Os azucres redutores medíronse mediante o método de Somogy19. Para iso, móense 0,02 g de brotes de plantas nun morteiro de porcelana con 10 ml de auga destilada e vértense nun vaso pequeno. Quenta o vaso ata ferver e despois filtra o seu contido usando papel de filtro Whatman n.º 1 para obter un extracto de planta. Transfire 2 ml de cada extracto a un tubo de ensaio e engade 2 ml de solución de sulfato de cobre. Cobre o tubo de ensaio con algodón e quéntao nun baño de auga a 100 °C durante 20 minutos. Nesta fase, o Cu2+ convértese en Cu2O por redución de monosacáridos aldehídicos e vese unha cor salmón (cor terracota) no fondo do tubo de ensaio. Despois de que o tubo de ensaio arrefríe, engade 2 ml de ácido fosfomolíbdico e aparecerá unha cor azul. Axita o tubo vigorosamente ata que a cor se distribúa uniformemente por todo o tubo. Le a absorbancia da solución a 600 nm usando un espectrofotómetro.
Calcule a concentración de azucres redutores usando a curva estándar. A concentración de carbohidratos solubles determinouse mediante o método de Fales20. Para iso, mesturáronse 0,1 g de xermolos con 2,5 ml de etanol ao 80 % a 90 °C durante 60 min (dúas etapas de 30 min cada unha) para extraer os carbohidratos solubles. Despois, o extracto fíltrase e o alcohol evapórase. O precipitado resultante disólvese en 2,5 ml de auga destilada. Verte 200 ml de cada mostra nun tubo de ensaio e engade 5 ml de indicador de antrona. A mestura colocouse nun baño de auga a 90 °C durante 17 min e, despois de arrefriar, determinouse a súa absorbancia a 625 nm.
O experimento foi un experimento factorial baseado nun deseño completamente aleatorio con catro réplicas. O procedemento PROC UNIVARIATE utilízase para examinar a normalidade das distribucións de datos antes da análise da varianza. A análise estatística comezou cunha análise estatística descritiva para comprender a calidade dos datos brutos recollidos. Os cálculos están deseñados para simplificar e comprimir conxuntos de datos grandes para facilitar a súa interpretación. Posteriormente realizáronse análises máis complexas. A proba de Duncan realizouse usando o software SPSS (versión 24; IBM Corporation, Armonk, NY, EUA) para calcular as medias cadradas e os erros experimentais para determinar as diferenzas entre conxuntos de datos. A proba múltiple de Duncan (DMRT) utilizouse para identificar diferenzas entre medias a un nivel de significancia de (0,05 ≤ p). O coeficiente de correlación de Pearson (r²) calculouse usando o software SPSS (versión 26; IBM Corp., Armonk, NY, EUA) para avaliar a correlación entre diferentes pares de parámetros. Ademais, realizouse unha análise de regresión lineal usando o software SPSS (v.26) para predicir os valores das variables do primeiro ano en función dos valores das variables do segundo ano. Por outra banda, realizouse unha análise de regresión paso a paso con p < 0,01 para identificar os trazos que inflúen criticamente nas follas da *schefflera anana*. Realizouse unha análise de rutas para determinar os efectos directos e indirectos de cada atributo no modelo (baseándose nas características que explican mellor a variación). Todos os cálculos anteriores (normalidade da distribución de datos, coeficiente de correlación simple, regresión paso a paso e análise de rutas) realizáronse co software SPSS V.26.
As mostras de plantas cultivadas seleccionadas estiveron de acordo coas directrices institucionais, nacionais e internacionais pertinentes e coa lexislación nacional de Irán.
A Táboa 1 mostra estatísticas descritivas de media, desviación estándar, mínimo, máximo, rango e coeficiente de variación fenotípico (CV) para varios trazos. Entre estas estatísticas, o CV permite a comparación de atributos porque é adimensional. Os azucres redutores (40,39 %), o peso seco da raíz (37,32 %), o peso fresco da raíz (37,30 %), a proporción azucre-azucre (30,20 %) e o volume da raíz (30 %) son os máis altos, e o contido de clorofila (9,88 %) e a área foliar teñen o índice máis alto (11,77 %) e o valor de CV máis baixo. A Táboa 1 mostra que o peso húmido total ten o rango máis alto. Non obstante, este trazo non ten o CV máis alto. Polo tanto, débense usar métricas adimensionais como o CV para comparar os cambios nos atributos. Un CV alto indica unha gran diferenza entre os tratamentos para este trazo. Os resultados deste experimento mostraron grandes diferenzas entre os tratamentos con baixo contido de azucre no peso seco da raíz, o peso da raíz fresca, a proporción de carbohidratos-azucre e as características do volume da raíz.
Os resultados da análise de varianza mostraron que, en comparación co control, a pulverización foliar con ácido xiberélico e benciladenina tivo un efecto significativo na altura da planta, número de follas, área foliar, volume da raíz, lonxitude da raíz, índice de clorofila, peso fresco e peso seco.
A comparación dos valores medios mostrou que os reguladores do crecemento das plantas tiveron un efecto significativo na altura da planta e no número de follas. Os tratamentos máis eficaces foron o ácido xiberélico a unha concentración de 200 mg/l e o ácido xiberélico + benciladenina a unha concentración de 200 mg/l. En comparación co control, a altura da planta e o número de follas aumentaron 32,92 veces e 62,76 veces, respectivamente (Táboa 2).
A área foliar aumentou significativamente en todas as variantes en comparación co control, observándose o aumento máximo a 200 mg/l para o ácido xiberélico, alcanzando os 89,19 cm2. Os resultados mostraron que a área foliar aumentou significativamente ao aumentar a concentración do regulador de crecemento (Táboa 2).
Todos os tratamentos aumentaron significativamente o volume e a lonxitude da raíz en comparación co control. A combinación de ácido xiberélico + benciladenina tivo o maior efecto, aumentando o volume e a lonxitude da raíz á metade en comparación co control (Táboa 2).
Os valores máis altos de diámetro do talo e lonxitude do internodo observáronse nos tratamentos de control e con ácido xiberélico + benciladenina 200 mg/l, respectivamente.
O índice de clorofila aumentou en todas as variantes en comparación co control. O valor máis alto deste trazo observouse cando se tratou con ácido xiberélico + benciladenina 200 mg/l, que foi un 30,21 % maior que o control (Táboa 2).
Os resultados mostraron que o tratamento provocou diferenzas significativas no contido de pigmentos, na redución de azucres e nos carbohidratos solubles.
O tratamento con ácido xiberélico + benciladenina deu lugar ao contido máximo de pigmentos fotosintéticos. Este signo foi significativamente maior en todas as variantes que no control.
Os resultados mostraron que todos os tratamentos puideron aumentar o contido de clorofila da *Schefflera anana*. Non obstante, o valor máis alto desta característica observouse no tratamento con ácido xiberélico + benciladenina, que foi un 36,95 % maior que o control (Táboa 3).
Os resultados para a clorofila b foron completamente similares aos resultados para a clorofila a, a única diferenza foi o aumento no contido de clorofila b, que foi un 67,15 % maior que o control (Táboa 3).
O tratamento resultou nun aumento significativo da clorofila total en comparación co control. O tratamento con ácido xiberélico 200 mg/l + benciladenina 100 mg/l levou ao valor máis alto deste carácter, que foi un 50 % superior ao control (Táboa 3). Segundo os resultados, o control e o tratamento con benciladenina a unha dose de 100 mg/l levaron ás taxas máis altas deste carácter. Liriodendron tulipifera ten o valor máis alto de carotenoides (Táboa 3).
Os resultados mostraron que, cando se trataron con ácido xiberélico a unha concentración de 200 mg/L, o contido de clorofila a aumentou significativamente a clorofila b (Fig. 1).
Efecto do ácido xiberélico e da benciladenina sobre a/b Ch. Proporcións de Schefflera anana. (GA3: ácido xiberélico e BA: benciladenina). As mesmas letras en cada figura non indican diferenzas significativas (P < 0,01).
O efecto de cada tratamento sobre o peso fresco e seco da madeira de *schefflera anana* foi significativamente maior que o do control. O ácido xiberélico + benciladenina a unha dose de 200 mg/l foi o tratamento máis eficaz, aumentando o peso fresco nun 138,45 % en comparación co control. En comparación co control, todos os tratamentos, agás o de 100 mg/L de benciladenina, aumentaron significativamente o peso seco da planta, e o de 200 mg/L de ácido xiberélico + benciladenina deu lugar ao valor máis alto para esta característica (Táboa 4).
A maioría das variantes diferiron significativamente do control neste aspecto, sendo os valores máis altos os de 100 e 200 mg/l de benciladenina e 200 mg/l de ácido xiberélico + benciladenina (Fig. 2).
A influencia do ácido xiberélico e a benciladenina na proporción de carbohidratos solubles e azucres redutores en *Schefflera anana*. (GA3: ácido xiberélico e BA: benciladenina). As mesmas letras en cada figura non indican diferenzas significativas (P < 0,01).
Realizouse unha análise de regresión paso a paso para determinar os atributos reais e comprender mellor a relación entre as variables independentes e o número de follas en *Liriodendron tulipifera*. O volume das raíces foi a primeira variable introducida no modelo, o que explicou o 44 % da variación. A seguinte variable foi o peso das raíces frescas, e estas dúas variables explicaron o 63 % da variación no número de follas (Táboa 5).
Realizouse unha análise de rutas para interpretar mellor a regresión paso a paso (Táboa 6 e Figura 3). O maior efecto positivo no número de follas asociouse coa masa de raíces frescas (0,43), que se correlacionou positivamente co número de follas (0,47). Isto indica que este trazo afecta directamente o rendemento, mentres que o seu efecto indirecto a través doutros trazos é insignificante, e que este trazo pode utilizarse como criterio de selección en programas de mellora para a *schefflera anana*. O efecto directo do volume das raíces foi negativo (−0,67). A influencia deste trazo no número de follas é directa, a influencia indirecta é insignificante. Isto indica que canto maior sexa o volume das raíces, menor será o número de follas.
A figura 4 mostra os cambios na regresión lineal do volume da raíz e dos azucres redutores. Segundo o coeficiente de regresión, cada unidade de cambio na lonxitude da raíz e nos carbohidratos solubles significa que o volume da raíz e os azucres redutores cambian en 0,6019 e 0,311 unidades.
O coeficiente de correlación de Pearson dos trazos de crecemento móstrase na Figura 5. Os resultados mostraron que o número de follas e a altura da planta (0,379*) tiveron a maior correlación positiva e significación.
Mapa de calor das relacións entre variables nos coeficientes de correlación da taxa de crecemento. # Eixe Y: 1-Índice Ch., 2-Internódo, 3-LAI, 4-N das follas, 5-Altura das patas, 6-Diámetro do talo. # Ao longo do eixe X: A – índice H, B – distancia entre nós, C – LAI, D – N da folla, E – altura das patas, F – diámetro do talo.
O coeficiente de correlación de Pearson para os atributos relacionados co peso húmido móstrase na Figura 6. Os resultados mostran a relación entre o peso húmido da folla e o peso seco sobre o chan (0,834**), o peso seco total (0,913**) e o peso seco da raíz (0,562*). A masa seca total ten a correlación positiva máis alta e significativa coa masa seca dos brotes (0,790**) e a masa seca da raíz (0,741**).
Mapa de calor das relacións entre as variables do coeficiente de correlación do peso fresco. # Eixe Y: 1 – peso das follas frescas, 2 – peso dos xemas frescos, 3 – peso das raíces frescas, 4 – peso total das follas frescas. # Eixe X: A – peso das follas frescas, B – peso dos xemas frescos, CW – peso das raíces frescas, D – peso total fresco.
Os coeficientes de correlación de Pearson para os atributos relacionados co peso seco móstranse na Figura 7. Os resultados amosan que o peso seco da folla, o peso seco das xemas (0,848**) e o peso seco total (0,947**), o peso seco das xemas (0,854**) e a masa seca total (0,781**) presentan os valores máis altos. Correlación positiva e correlación significativa.
Mapa de calor das relacións entre as variables do coeficiente de correlación do peso seco. # O eixe Y representa: peso seco de 1 folla, peso seco de 2 xemas, peso seco de 3 raíces, peso seco total de 4. # Eixe X: peso seco da folla A, peso seco da xema B, peso seco da raíz CW, peso seco total de D.
O coeficiente de correlación de Pearson das propiedades dos pigmentos móstrase na Figura 8. Os resultados amosan que a clorofila a e a clorofila b (0,716**), a clorofila total (0,968**) e os pigmentos totais (0,954**); a clorofila b e a clorofila total (0,868**) e os pigmentos totais (0,851**); a clorofila total ten a maior correlación positiva e significativa cos pigmentos totais (0,984**).
Mapa de calor das relacións entre as variables do coeficiente de correlación da clorofila. # Eixes Y: 1- Canal a, 2- Canal b, 3 – relación a/b, 4 canais. Total, 5-carotenoides, 6-produto de pigmentos. # Eixes X: A-Carotenoides. aB-Carotenoides. b, C – relación a/b, D-Carotenoides. Contido total, E-carotenoides, F-produto de pigmentos.
A *Schefflera anana* é unha planta de interior popular en todo o mundo, e o seu crecemento e desenvolvemento está a recibir moita atención hoxe en día. O uso de reguladores do crecemento das plantas deu lugar a diferenzas significativas, xa que todos os tratamentos aumentaron a altura da planta en comparación co control. Aínda que a altura da planta adoita controlarse xeneticamente, a investigación demostra que a aplicación de reguladores do crecemento das plantas pode aumentar ou diminuír a altura da planta. A altura da planta e o número de follas tratadas con ácido xiberélico + benciladenina 200 mg/L foron os máis altos, alcanzando os 109 cm e os 38,25, respectivamente. En consonancia con estudos previos (SalehiSardoei et al.52) e Spathiphyllum23, observáronse aumentos similares na altura da planta debido ao tratamento con ácido xiberélico en caléndulas en maceta, *Albus alba*21, azucenas22, azucenas, madeira de agar e azucenas.
O ácido xiberélico (AG) desempeña un papel importante en varios procesos fisiolóxicos das plantas. Estimula a división celular, o alongamento celular, o alongamento do talo e o aumento do tamaño24. O AG induce a división celular e o alongamento nos ápices e meristemas dos brotes25. Os cambios nas follas tamén inclúen unha diminución do grosor do talo, un tamaño de folla máis pequeno e unha cor verde máis brillante26. Os estudos que empregan factores inhibitorios ou estimulantes demostraron que os ións de calcio de fontes internas actúan como segundos mensaxeiros na vía de sinalización da xiberelina na corola do sorgo27. O AH aumenta a lonxitude da planta ao estimular a síntese de encimas que causan a relaxación da parede celular, como XET ou XTH, expansinas e PME28. Isto fai que as células se agranden a medida que a parede celular se relaxa e a auga entra na célula29. A aplicación de AG7, AG3 e AG4 pode aumentar o alongamento do talo30,31. O ácido xiberélico provoca o alongamento do talo nas plantas ananas e, nas plantas en roseta, o AG retarda o crecemento das follas e o alongamento do internodo32. Non obstante, antes da fase reprodutiva, a lonxitude do talo aumenta ata 4-5 veces a súa altura orixinal33. O proceso de biosíntese de GA nas plantas resúmese na Figura 9.
Biosíntese de GA en plantas e niveis de GA bioactivo endóxeno, representación esquemática das plantas (dereita) e biosíntese de GA (esquerda). As frechas están codificadas por cores para corresponder á forma de HA indicada ao longo da vía biosintética; as frechas vermellas indican niveis de GC diminuídos debido á localización nos órganos da planta e as frechas negras indican niveis de GC aumentados. En moitas plantas, como o arroz e a sandía, o contido de GA é maior na base ou na parte inferior da folla30. Ademais, algúns informes indican que o contido de GA bioactivo diminúe a medida que as follas se alongan desde a base34. Os niveis exactos de xiberelinas nestes casos son descoñecidos.
Os reguladores do crecemento das plantas tamén inflúen significativamente no número e na área das follas. Os resultados mostraron que o aumento da concentración do regulador do crecemento das plantas provocou un aumento significativo na área e no número de follas. Informouse de que a benciladenina aumenta a produción de follas de cal15. Segundo os resultados deste estudo, todos os tratamentos melloraron a área e o número de follas. O ácido xiberélico + benciladenina foi o tratamento máis eficaz e deu lugar ao maior número e área de follas. Ao cultivar schefflera anana en interiores, pode haber un aumento notable no número de follas.
O tratamento con GA3 aumentou a lonxitude do internodo en comparación coa benciladenina (BA) ou sen tratamento hormonal. Este resultado é lóxico dado o papel do GA na promoción do crecemento7. O crecemento do talo tamén mostrou resultados similares. O ácido xiberélico aumentou a lonxitude do talo pero diminuíu o seu diámetro. Non obstante, a aplicación combinada de BA e GA3 aumentou significativamente a lonxitude do talo. Este aumento foi maior en comparación coas plantas tratadas con BA ou sen a hormona. Aínda que o ácido xiberélico e as citocininas (CK) xeralmente promoven o crecemento das plantas, nalgúns casos teñen efectos opostos en diferentes procesos35. Por exemplo, observouse unha interacción negativa no aumento da lonxitude do hipocótilo nas plantas tratadas con GA e BA36. Por outra banda, o BA aumentou significativamente o volume da raíz (Táboa 1). Informouse dun aumento do volume da raíz debido ao BA exóxeno en moitas plantas (por exemplo, especies de Dendrobium e Orchid)37,38.
Todos os tratamentos hormonais aumentaron o número de follas novas. O aumento natural da área foliar e da lonxitude do talo mediante tratamentos combinados é comercialmente desexable. O número de follas novas é un indicador importante do crecemento vexetativo. O uso de hormonas exóxenas non se empregou na produción comercial de *Liriodendron tulipifera*. Non obstante, os efectos promotores do crecemento do ácido gástrico (GA) e a citrato de célula (CK), aplicados en equilibrio, poden proporcionar novos coñecementos para mellorar o cultivo desta planta. Cabe destacar que o efecto sinérxico do tratamento con BA + GA3 foi maior que o do GA ou BA administrados sós. O ácido xiberélico aumenta o número de follas novas. A medida que se desenvolven follas novas, o aumento do número delas pode limitar o crecemento das follas39. Informouse de que o GA mellora o transporte de sacarosa desde os sumidoiros aos órganos de orixe40,41. Ademais, a aplicación exóxena de GA a plantas perennes pode promover o crecemento de órganos vexetativos como as follas e as raíces, o que impide a transición do crecemento vexetativo ao crecemento reprodutivo42.
O efecto do ácido xiberélico (GA) no aumento da materia seca da planta pódese explicar por un aumento da fotosíntese debido a un aumento da área foliar43. Informouse de que o GA causa un aumento da área foliar do millo34. Os resultados mostraron que aumentar a concentración de ácido xiberélico (BA) a 200 mg/L podería aumentar a lonxitude e o número de ramas secundarias e o volume da raíz. O ácido xiberélico inflúe en procesos celulares como a estimulación da división celular e o alongamento, mellorando así o crecemento vexetativo43. Ademais, o ácido xiberélico expande a parede celular hidrolizando o amidón en azucre, reducindo así o potencial hídrico da célula, facendo que a auga entre na célula e, en última instancia, levando ao alongamento celular44.
Data de publicación: 08 de maio de 2024